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FC 2000顯微葉綠素?zé)晒獬上裣到y(tǒng)
更新時(shí)間：2018-03-16
訪問次數(shù)：3755
FC 2000顯微葉綠素?zé)晒獬上裣到y(tǒng)將GFP和葉綠素?zé)晒鈩恿W(xué)成像的全部功能擴(kuò)展到了單細(xì)胞和亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)水平。所有傳統(tǒng)的熒光參數(shù)都可以以測微計(jì)的分辨率成像，因此對單個(gè)細(xì)胞、單個(gè)葉綠體甚至基粒-基質(zhì)類囊體片段的研究都可以實(shí)現(xiàn)。
FC 2000顯微葉綠素?zé)晒獬上裣到y(tǒng)
FC 2000顯微葉綠素?zé)晒獬上裣到y(tǒng)將GFP和葉綠素?zé)晒鈩恿W(xué)成像的全部功能擴(kuò)展到了單細(xì)胞和亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)水平。所有傳統(tǒng)的熒光參數(shù)都可以以測微計(jì)的分辨率成像，因此對單個(gè)細(xì)胞、單個(gè)葉綠體甚至基粒-基質(zhì)類囊體片段的研究都可以實(shí)現(xiàn)。
應(yīng)用領(lǐng)域
· 植物光合特性和代謝紊亂篩選
· 生物和非生物脅迫的檢測
· 植物抗脅迫能力或者易感性研究
· 代謝混亂研究
· 長勢與產(chǎn)量評估
· 植物——微生物交互作用研究
· 植物——原生動物交互作用研究
· 基因工程與分子生物學(xué)研究，GFP、BFP、YFP、CY3、CY5等示蹤成像
典型樣品
· 葉片切片
· 綠藻
· 藻青菌
· 葉綠體
· 類囊體
· 其它
工作原理
植物熒光成像系統(tǒng)用于檢測植物發(fā)出熒光的動態(tài)變化和空間分布，Kautsky效應(yīng)過程、熒光淬滅及其它瞬時(shí)熒光過程（瞬變）都可被攝取，從而提供2維熒光圖像。測量與計(jì)算參數(shù)多達(dá)50多個(gè)：F0, FM, FV, F0', FM', FV', QY（II），NPQ, ΦPSII, FV/FM, FV'/FM', RFd, qN, qP, PAR吸收率, 光合電子傳遞率ETR等。這些熒光參數(shù)圖像可用于研究植物的光合生理、優(yōu)良品種篩選及果實(shí)的成熟過程等等，還可研究因病變、衰老、環(huán)境脅迫或基因突變造成的熒光變化。
功能特點(diǎn)：實(shí)驗(yàn)過程和測量參數(shù)
· 葉綠素?zé)晒馀cGFP、BFP、YFP、CY3、CY5等熒光成像
· Meter功能
· 熒光誘導(dǎo)過程（Kausky效應(yīng)）分析
· 葉綠素?zé)晒獯銣邕^程（NPQ過程）分析
· PAR吸收系數(shù)測定
· QA再氧化過程分析
· 可測量與計(jì)算多達(dá)50個(gè)參數(shù): Fo, FM, Fs, Fo’, FM’, FV’, QY（II）， NPQ, FV/FM, FV’/FM’, Rfd, qN, qP, PAR-吸光系數(shù), 電子傳遞速率（ETR）, 及其它。
技術(shù)參數(shù)
· F1/1.4目鏡，有不同放大倍數(shù)選擇（1.2x, 5x, 10x, 20x, 40x, 60x, 100x），測量區(qū)域zui大可達(dá)2x2cm（1.2倍），zui小達(dá)微米級
· 光源：藍(lán)色 LED （450nm），紅色 LED （630nm），UV LED （390nm） 及 IR 735nm （用于PAR、暗適應(yīng)及 F0`）
· 測量光閃10µs - 100µs可調(diào)；光化學(xué)光可達(dá)3000µmol/m2.s；飽含光閃（脈沖）zui大可達(dá)8000µmol/m2.s，強(qiáng)度和持續(xù)時(shí)間（zui大達(dá)2s）可調(diào)
· STF -單次翻轉(zhuǎn)飽和光閃，強(qiáng)度可達(dá)120,000 µmol（photons）/m².s ，100µs脈沖
· 顯微葉綠素?zé)晒獬上裣到y(tǒng)自帶濾光輪（濾波器輪）和紅外光源（IR 735nm）
· 可根據(jù)需要測量多種熒光參數(shù)達(dá)25個(gè)以上，用于Kautsky誘導(dǎo)效應(yīng)、熒光淬滅、OJIP等測量分析研究
· 可根據(jù)客戶需求加接配置用于綠色熒光蛋白（GFP）成像。帶6位濾波輪的顯微葉綠素?zé)晒獬上裣到y(tǒng)可測量更復(fù)雜的參數(shù)，如GFP, BFP, YFP, CY3, CY5等
· CCD檢測器帶寬：400 – 1000 nm
· CCD 制式：512 x 512 像素; 可選 640 x 480 像素或 1392 x 1040 像素
· 像素尺寸：8.2 µm x 8.4 µm
· A/D 轉(zhuǎn)換分辨率：12 位
· 光譜響應(yīng)：540 nm處量子效率zui高（70 %）,400 nm 和 650 nm 處轉(zhuǎn)降50 %
· 讀出噪音：低于12eRMS，典型10e
· 滿阱容量：大于 70,000 e （unbinned）
· 成像頻率：50 張圖片每秒
· Bios：固件可升級
· 通訊方式：USB 2.0
· 電源輸入：Appr. 1100 W
· 供電電壓：90 – 240 V
操作軟件與實(shí)驗(yàn)結(jié)果
· 內(nèi)置常用測量程序
- 用戶可自定義實(shí)驗(yàn)程序，界面友好
· 可自動重復(fù)測量
· 視野內(nèi)單個(gè)植物或樣品的自動識別與標(biāo)記
· 視野內(nèi)所有樣品數(shù)據(jù)的動力學(xué)分析
· 多圖像處理工具
· 條形碼讀卡器支持，便于批量處理樣品
· 數(shù)據(jù)可導(dǎo)出為excel
· Windows 2000, XP, Vista兼容
配置型號指南：
- 1. Micro-FluorCam FC 2000-ST
內(nèi)含: CCD 相機(jī); 簡單顯微鏡架;光學(xué)組件;控制單元;高性能PC;激發(fā)光源;軟件包;使用手冊. - 2. Micro-FluorCam FC 2000-EN
內(nèi)含: CCD 相機(jī);帶可更換可擴(kuò)展組件的機(jī)械強(qiáng)化顯微鏡架（Olympus BX40）;機(jī)械強(qiáng)化光學(xué)組件;控制單元;高性能PC;激發(fā)光源;軟件包;使用手冊. - 3. Micro-FluorCam FC 2000-MFW
內(nèi)含: 6位濾波輪; CCD相機(jī);帶可更換可擴(kuò)展組件的機(jī)械強(qiáng)化顯微鏡架（Olympus BX40）;機(jī)械強(qiáng)化光學(xué)組件;控制單元;PC高性能PC;激發(fā)光源;軟件包;使用手冊. - 4. Micro-FluorCam FC 2000-EFW
內(nèi)含：6位*軟件控制的濾波輪; CCD相機(jī);帶可更換可擴(kuò)展組件的機(jī)械強(qiáng)化顯微鏡架（Olympus BX40）;機(jī)械強(qiáng)化光學(xué)組件;控制單元;高性能PC;激發(fā)光源;軟件包;使用手冊. - 5. Kinetic Fluorescence Microscope FC 2000-Z 詳見FKM多功能熒光動態(tài)顯微監(jiān)測系統(tǒng)
典型應(yīng)用：
Scheme of the Micro-FluorCam
產(chǎn)地：歐洲
參考文獻(xiàn)：
l A microscope for two-dimensional measurements of in vivo chlorophyll fluorescence kinetics using pulsed measuring radiation, continuous actinic radiation, and saturating flashes . Kuepper H. et al, 2000. Photosynthetica
l New insights into photosynthetic oscillations revealed by two-dimensional microscopic measurements of chlorophyll fluorescence kinetics in intact leaves and isolated protoplasts. Ferimazova N. et al. （2002）: Photochemistry and Photobiology
l Microscopy and single molecule detection in photosynthesis. Vacha F. et al, 2005. Micron
l Stress-induced filament fragmentation of calothrix elenkinii （cyanobacteria） is facilitated by death of high-fluorescence cells. Adamec F, et al. （2005）: Journal of Phycology
l Identification of Photosystem I and Photosystem II enriched regions of thylakoid membrane by optical microimaging of cryo-fluorescence emission spectra and of variable fluorescence. Vacha F. et al, 2007. Micron